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IntroducciónEl cartílago es un tejido avascular con escasa capacidad de regeneración. Las estrategias de reparación quirúrgica existentes tienen una eficacia limitada [1], [2], [3], y en gran medida sólo sirven para retrasar la aparición de la artrosis [4], [5]. Se prevé que las terapias celulares autólogas superen estas barreras regenerativas, permitiendo la reparación de los defectos y la restauración de la función articular a largo plazo [6], [7]. Sin embargo, en la práctica, las terapias celulares sólo han demostrado una eficacia modesta en comparación con protocolos de tratamiento menos complejos y menos costosos, como la microfractura [8], [9]. No obstante, la capacidad de las terapias celulares para suministrar más células de un fenotipo adecuado en los lugares con defectos se considera una característica única que, en última instancia, permitirá su eficacia. En particular, la fabricación de esta población celular ideal sigue siendo un reto [10].
Las estrategias clínicamente aprobadas para la reparación de defectos de cartílago con células utilizan condrocitos autólogos extraídos de regiones de la articulación que no soportan peso [6], [11]. La selección de condrocitos articulares como población de partida es racional, ya que estas células tienen un fenotipo apropiado para la formación de tejido cartilaginoso articular. Sin embargo, este fenotipo “óptimo” se pierde cuando el número finito de condrocitos del donante se expande utilizando las metodologías tradicionales de cultivo tisular bidimensional (2D) [12], [13]. Varios grupos de investigación han explorado alternativas a los procesos convencionales de expansión en 2D [14], [15], [16], pero todavía no se ha conseguido evitar la desdiferenciación de los condrocitos y, al mismo tiempo, lograr la expansión necesaria en un tiempo clínicamente relevante.
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Las micropartículas insertadas en pequeños vasos sanguíneos alrededor de la rodilla ayudaron a reducir el dolor y mejorar la función de ocho enfermos de artritis, según los resultados de un ensayo clínico. Los resultados se presentaron el lunes en la reunión anual de la Sociedad de Radiología Intervencionista, en Los Ángeles.
Gran parte del dolor que produce la artritis de rodilla procede en realidad de la inflamación del revestimiento de la articulación de la rodilla, también llamado sinovio, dijo Bagla. De hecho, los pequeños vasos sanguíneos creados por la artritis degenerativa alimentan esta inflamación al aumentar el flujo sanguíneo hacia el revestimiento.
Para tratar este problema, Bagla y sus colegas decidieron intentar bloquear esos pequeños vasos sanguíneos mediante micropartículas, es decir, esferas de una décima de milímetro de tamaño fabricadas con un material sintético similar al gel.
En el pequeño estudio piloto -el primer ensayo clínico estadounidense de este procedimiento- participaron 20 pacientes con dolor de artritis de moderado a grave. Sólo 13 se habían sometido al procedimiento en el momento de la reunión anual del lunes, y sólo ocho habían llegado al mes de seguimiento, dijo Bagla.
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Un profesional de la medicina es la mejor persona a la que consultar cuando se sufre un dolor de rodilla. Por lo general, la mejor manera de tratar las molestias es diagnosticar la afección. Un médico le ayudará a encontrar el tratamiento adecuado. Le sugiero encarecidamente que visite el tratamiento del dolor de rodilla Lakeland para saber más sobre esto. Dependiendo de la causa del dolor, el tratamiento puede variar. Algunos tratamientos son eficaces y otros no. Aquí hay una breve explicación de los tipos más comunes de los tratamientos. A continuación se ofrecen algunos consejos sobre cómo obtener el mejor tratamiento para el dolor de rodilla.
Su médico le hará un examen médico completo. El médico le preguntará por sus síntomas y puede realizar estudios de diagnóstico por imagen para determinar la causa exacta del dolor. También examinará la rodilla para ver si hay hinchazón y sensibilidad. También puede haber otros síntomas asociados a la rodilla, como calambres, inflamación y entumecimiento. Se recomiendan las resonancias magnéticas y las tomografías computarizadas para determinar la naturaleza exacta de la afección. Si el médico sospecha que se trata de una afección más grave, le recetará medicamentos para tratar el dolor.
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Análisis histológico y tinción de inmunofluorescenciaDespués de 3 semanas de cocultivo, se realizó la tinción H&E y la tinción con azul Alcian. En general, las células en pellets mostraron una mejor deposición de matriz y producción de glicosaminoglicanos en comparación con las células en monocapa. En concreto, para la tinción de H&E (Fig. 3a), las células del grupo de cocultivo en monocapa formaron un gran grupo celular; las células del grupo de cocultivo en pellets formaron un pellet más denso en comparación con el cultivo en pellets de las MSC de IPFP o de las CA solas. En particular, para la tinción con azul Alcian (Fig. 3b), el grupo de cocultivo no mostró mucha diferencia en comparación con los otros grupos, tanto en el cultivo en monocapa como en el de pellets.Fig. 3Análisis histológico del monocultivo de células madre mesenquimales (MSCs) de IPFP, del monocultivo de condrocitos articulares (ACs) y del cocultivo de MSCs y ACs después de 3 semanas de inducción condrogénica. a Tinción de H&E mostrando la distribución de las células y de la matriz. b Tinción de azul Alcian mostrando la deposición de GAGsImagen a tamaño completo
También se detectó la inmunofluorescencia de SOX9 y de las principales proteínas de la MEC (colágeno tipo I, II y X). En el cultivo en monocapa (Fig. 4a), el grupo de MSC de IPFP tenía abundante colágeno de tipo X, el grupo de AC tenía abundante colágeno de tipo I, y el grupo de cocultivo tenía abundante colágeno de tipo I y de tipo II. Además, la tinción de los marcadores condrogénicos aggrecan y SOX9 en el grupo de cocultivo era mucho más fuerte que en el grupo de MSC IPFP o en el grupo AC. En las secciones de pellets (Fig. 4b), la tinción del colágeno de tipo I y de tipo II fue más fuerte en el grupo de cocultivo que en el grupo de MSC IPFP o en el grupo de CA, mientras que la tinción de aggrecan y SOX9 fue relativamente similar entre los grupos.Fig. 4 Ensayo de inmunofluorescencia del monocultivo de células madre mesenquimales (MSC) IPFP, del monocultivo de condrocitos articulares (AC) y del cocultivo de MSC y AC después de 3 semanas de inducción condrogénica. a Imágenes fluorescentes de monocapas bidimensionales. b Imágenes fluorescentes de secciones tridimensionales de pellets. ColágenoImagen a tamaño completo